Toxoptera aurantii

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Toxoptera aurantii es el áfido más corriente en el cacao, en condiciones experimentales se ha descubierto que puede producir una generación cada 7,76 días a 28-30ºC. Las colonias tienen normalmente menos de 1.000 individuos y aunque el áfido tiene un gran potencial reproductivo, tiene una densidad óptima de hasta 20 individuos/3,14 cm². Afecta a unas 120 especies de muchas familias. Ataca tanto a hojas como a inflorescencias o nodos de crecimiento en varias partes del ciclo. Su distribución va más allá de los trópicos llegando a China, Rusia, África del Norte, el Sudeste Europeo y a regiones de América del Norte y del Sur, pero en regiones no tropicales no afecta a tantas a plantas. Toxoptera aurantii causa muchos daños en hojas y frutos y pérdidas económicas en países tropicales y subtropicales.

Hospedadores primarios: Camellia sinensis, Citrus, Coffea, Mangifera indica, Theobroma cacao.

Hospedadores secundarios: Annona, Camellia, Cinchona, Ficus, Gardenia, Magnolia.

Toxoptera aurantii es una animal polifágico que emite un sonido característico: estridulación. Puede actuar como vector de virus en cítricos y otras plantas. Vive en colonias en el envés de las hojas y los brotes más jóvenes. Las hojas se deforman y se enrollan y las inflorescencias se tuercen y distorsionan. Podemos distinguir:

[editar] Hembras ápteras vivíparas

Cuerpo oval de 1,1 a 2,0 mm negro, rojizo o marrón. La cabeza es negra, el abdomen más pálido, rostro detrás de las coxas medias, espículas en la tibia que es de un color grisáceo, plato anal y genital negros, frente ligeramente convexa, antenas imbricadas (0,78 x cuerpo) longitud en proporción de los segmentos I-VI, 21, 19, 100, 85, 75, 31+128.

[editar] Hembras aladas vivíparas

Cuerpo oval de 1,1 a 1,8 mm negro o marrón mm cabeza y tórax negros. Longitud en proporción de los segmentos I-VI, 23, 21, 100, 81, 73, 27+124, antenas 0.83x de cuerpo.

Estudios en la biología de T. aurantii en el cacao en Ghana, demostraron que las poblaciones eran sólo de hembras que presentaban una reproducción partenogenética y vivípara. Se restringirían a la superficie foliar y presentarían un óptimo de desarrollo a los 22ºC. La aparición de individuos alados se debería a la masificación y a la edad de la hoja.

[editar] Control

La plaga vive en densas colonias en las hojas o brotes jóvenes, en el campo pueden verse individuos ápteros, ovales, brillantes, rojizos o negruzcos, los alados tienen un abdomen entre negro y marrón, presentan en las alas anteriores un pterostigma negro y normalmente ramificado una vez, lo que es inusual en Aphidinae.

[editar] Control biológico: enemigos naturales

Serían los métodos más efectivos:

Parasitoides:

 - Aphelinus chaonia, ninfas y adultos en  China e Italia.
 - Aphidius colemani, ninfas y adultos en Australia, Tonga, Perú, Israel, el Líbano.
 - Aphidius matricariae
 - Aphidius picipes
 - Diaeretiella rapae
 - Ephedrus persicae
 - Lipolexis gracilis
 - Lipolexis scutellaris
 - Lysiphlebus confusus
 - Lysiphlebus fabarum, ninfas y adultos :Georgia, Líbano y países europeos del Mediterráneo.
 - Lysiphlebus testaceipes, ninfas y adultos en Estados Unidos, Chile, Cuba, Perú y se ha introducido en países europeos del Mediterráneo. Es el mejor.
 - Praon volucre, ninfas y adultos en el Líbano.
 - Psyllaephagus pulvinatus
 - Trioxys angelicae
 - Trioxys indicus

Depredadores:

 - Adalia bipunctata
 - Alobaccha nubilipennis
 - Anelosimus studiosus
 - Betasyrphus serarius
 - Chrysoperla carnea, ninfas y adultos en China y países europeos del Mediterráneo.
 - Coccinella septempunctata
 - Coccinella transversoguttata
 - Dideopsis aegrota
 - Episyrphus balteatus
 - Hippodamia variegata
 - Hyperaspis senegalensis
 - Ischiodon scutellaris
 - Mallada boninensis
 - Paragus tibialis
 - Pharoscymnus madagassus
 - Scaeva pyrastri

Patógenos:

 - Entomophthora bresenii
 - Entomophthora gracilis

[editar] Control químico

Tan pronto como se detecte la plaga se debe empezar con el tratamiento: lo más corriente es rociar con parathion-methyl los brotes jóvenes, a veces en altas concentraciones, parece ser que la última semana de mayo y las dos primeras de junio serían las más adecuadas. En Castellón se han probado acephate, dimethoate, ethiofencarb, phosphamidon, lindane, menazon, oxydemeton-methyl y pirimicarb obteniéndose buenos resultados.